Prospective multicenter evaluation of real time PCR Kit prototype for early diagnosis of congenital Chagas disease
Alejandro Francisco Benatar,
Emmaría Danesi,
Susana Alicia Besuschio,
Santiago Bortolotti,
María Luisa Cafferata,
Juan Carlos Ramirez,
Constanza Lopez Albizu,
Karenina Scollo,
María Baleani,
Laura Lara,
Gustavo Agolti,
Sandra Seu,
Elsa Adamo,
Raúl Horacio Lucero,
Lucía Irazu,
Marcelo Rodriguez,
Andrés Poeylaut-Palena,
Silvia Andrea Longhi,
Mónica Esteva,
Fernando Althabe,
Federico Rojkin,
Jacqueline Bua,
Sergio Sosa-Estani,
Alejandro Gabriel Schijman
Affiliations
Alejandro Francisco Benatar
Laboratorio de Biología Molecular de la Enfermedad de Chagas (LaBMECh) Instituto de Investigaciones en Ingeniería Genética y Biología Molecular “Dr Héctor Torres” (INGEBI) - Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas, CONICET; Ciudad Autónoma de Buenos Aires, Argentina; Corresponding author.
Emmaría Danesi
Centro Nacional de Diagnóstico e Investigación en Endemoepidemias (ANLIS Dr. C. G. Malbrán, Ciudad Autónoma de Buenos Aires, Argentina)
Susana Alicia Besuschio
Laboratorio de Biología Molecular de la Enfermedad de Chagas (LaBMECh) Instituto de Investigaciones en Ingeniería Genética y Biología Molecular “Dr Héctor Torres” (INGEBI) - Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas, CONICET; Ciudad Autónoma de Buenos Aires, Argentina
Santiago Bortolotti
Centro de Investigación y Biotecnología (CIBIO) de Wiener Laboratorios SAIC, Rosario, Pcia. de Santa Fe, Argentina
María Luisa Cafferata
Departamento en Salud de la Madre y el Niño, Instituto de Efectividad Clínica y Sanitaria, Ciudad Autónoma de Buenos Aires, Argentina
Juan Carlos Ramirez
Laboratorio de Biología Molecular de la Enfermedad de Chagas (LaBMECh) Instituto de Investigaciones en Ingeniería Genética y Biología Molecular “Dr Héctor Torres” (INGEBI) - Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas, CONICET; Ciudad Autónoma de Buenos Aires, Argentina
Constanza Lopez Albizu
Instituto Nacional de Parasitología Dr. M. Fatala Chabén; Administración Nacional de Laboratorios e Institutos de Salud Carlos G. Malbrán (ANLIS-Malbrán); Ciudad Autónoma de Buenos Aires, Argentina.
Karenina Scollo
Instituto Nacional de Parasitología Dr. M. Fatala Chabén; Administración Nacional de Laboratorios e Institutos de Salud Carlos G. Malbrán (ANLIS-Malbrán); Ciudad Autónoma de Buenos Aires, Argentina.
María Baleani
Centro de Investigación y Biotecnología (CIBIO) de Wiener Laboratorios SAIC, Rosario, Pcia. de Santa Fe, Argentina
Laura Lara
Instituto de Maternidad y Ginecología ''Nuestra Señora de las Mercedes'', San Miguel de Tucumán, Pcia. de Tucumán, Argentina
Gustavo Agolti
Hospital ''Dr. Julio César Perrando'', Resistencia, Pcia. de Chaco, Argentina
Sandra Seu
Hospital Regional ''Dr. Ramón Carrillo'', Santiago del Estero, Pcia. de Santiago del Estero, Argentina
Elsa Adamo
Centro Integral de Salud La Banda, La Banda, Pcia. de Santiago del Estero, Argentina
Raúl Horacio Lucero
Instituto de Medicina Regional, Universidad Nacional del Nordeste (IMR-UNNE) Resistencia, Provincia de Chaco, Argentina
Lucía Irazu
Departamento de Calidad. Administración Nacional de Laboratorios e Institutos de Salud Carlos G. Malbrán (ANLIS-Malbrán).
Marcelo Rodriguez
Departamento de Calidad. Administración Nacional de Laboratorios e Institutos de Salud Carlos G. Malbrán (ANLIS-Malbrán).
Andrés Poeylaut-Palena
Centro de Investigación y Biotecnología (CIBIO) de Wiener Laboratorios SAIC, Rosario, Pcia. de Santa Fe, Argentina
Silvia Andrea Longhi
Laboratorio de Biología Molecular de la Enfermedad de Chagas (LaBMECh) Instituto de Investigaciones en Ingeniería Genética y Biología Molecular “Dr Héctor Torres” (INGEBI) - Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas, CONICET; Ciudad Autónoma de Buenos Aires, Argentina
Mónica Esteva
Instituto Nacional de Parasitología Dr. M. Fatala Chabén; Administración Nacional de Laboratorios e Institutos de Salud Carlos G. Malbrán (ANLIS-Malbrán); Ciudad Autónoma de Buenos Aires, Argentina.
Fernando Althabe
Departamento en Salud de la Madre y el Niño, Instituto de Efectividad Clínica y Sanitaria, Ciudad Autónoma de Buenos Aires, Argentina
Federico Rojkin
Centro de Investigación y Biotecnología (CIBIO) de Wiener Laboratorios SAIC, Rosario, Pcia. de Santa Fe, Argentina
Jacqueline Bua
Instituto Nacional de Parasitología Dr. M. Fatala Chabén; Administración Nacional de Laboratorios e Institutos de Salud Carlos G. Malbrán (ANLIS-Malbrán); Ciudad Autónoma de Buenos Aires, Argentina.
Sergio Sosa-Estani
Departamento en Salud de la Madre y el Niño, Instituto de Efectividad Clínica y Sanitaria, Ciudad Autónoma de Buenos Aires, Argentina; Instituto Nacional de Parasitología Dr. M. Fatala Chabén; Administración Nacional de Laboratorios e Institutos de Salud Carlos G. Malbrán (ANLIS-Malbrán); Ciudad Autónoma de Buenos Aires, Argentina.
Alejandro Gabriel Schijman
Laboratorio de Biología Molecular de la Enfermedad de Chagas (LaBMECh) Instituto de Investigaciones en Ingeniería Genética y Biología Molecular “Dr Héctor Torres” (INGEBI) - Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas, CONICET; Ciudad Autónoma de Buenos Aires, Argentina; Corresponding author.
Background: Current algorithm for Congenital Chagas Disease (cCD) diagnosis is unsatisfactory due to low sensitivity of the parasitological methods. Moreover, loss to follow-up precludes final serodiagnosis after nine months of life in many cases. A duplex TaqMan qPCR kit for Trypanosoma cruzi DNA amplification was prospectively evaluated in umbilical cord (UCB) and peripheral venous blood (PVB) of infants born to CD mothers at endemic and non-endemic sites of Argentina. Methods: We enrolled and followed-up 370 infants; qPCR was compared to gold-standard cCD diagnosis following studies of diagnostic accuracy guidelines. Findings: Fourteen infants (3·78%) had cCD. The qPCR sensitivity and specificity were higher in PVB (72·73%, 99·15% respectively) than in UCB (66·67%, 96·3%). Positive and negative predictive values were 80 and 98·73% and 50 and 98·11% for PVB and UCB, respectively. The Areas under the Curve (AUC) of ROC analysis for qPCR and micromethod (MM) were 0·81 and 0·67 in UCB and 0·86 and 0·68 in PVB, respectively. Parasitic loads ranged from 37·5 to 23,709 parasite equivalents/mL. Discrete typing Unit Tc V was identified in five cCD patients and in six other cCD cases no distinction among Tc II, Tc V or Tc VI was achieved. Interpretation: This first prospective field study demonstrated that qPCR was more sensitive than MM for early cCD detection and more accurate in PVB than in UCB. Its use, as an auxiliary diagnostic tool to MM will provide more accurate records on cCD incidence. Funding: FITS SALUD 001-CHAGAS (FONARSEC, MINCyT, Argentina) to the Public-Private Consortium (INGEBI-CONICET, INP-ANLIS MALBRAN and Wiener Laboratories); ERANET-LAC-HD 328 to AGS and PICT 2015-0074 (FONCYT, MinCyT) to AGS and FA.